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Vi-CELL BLU細(xì)胞計數(shù)和活率分析儀的線性關(guān)系

點擊次數(shù):209 更新時間:2025-04-16

Vi-CELL BLU細(xì)胞計數(shù)儀能夠?qū)崿F(xiàn)自動地細(xì)胞計數(shù)和細(xì)胞活率分析。樣品可以通過24位轉(zhuǎn)盤或96孔板進(jìn)行加載,在快速檢測模式下,僅需170uL樣品體積即可確定細(xì)胞計數(shù)、密度和活率。該儀器將樣品的制備、分析和運行后清潔過程實現(xiàn)自動化,使其易于使用,同時還能提供用戶可信賴的分析結(jié)果。在本應(yīng)用短文中,我們展示了Vi-CELL BLU在整個濃度檢測范圍(從50,000到15,000,000個細(xì)胞/mL)內(nèi)的線性關(guān)系。為此,我們使用校準(zhǔn)質(zhì)控微球?qū)υO(shè)備的性能進(jìn)行了測試。此后,我們準(zhǔn)備了培養(yǎng)的CHO細(xì)胞稀釋系列,以驗證該儀器對活細(xì)胞的檢測效果。

 

 

 

濃度質(zhì)控微球

 

 

首先,按照相應(yīng)手冊中的描述,使用Vi-CELL BLU細(xì)胞計數(shù)儀測量了幾種質(zhì)控品(表1)。在分析過程中,選擇細(xì)胞類型BCI Conc Beads,Dilution選1和常規(guī)檢測模式。

 

表1:質(zhì)控品

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每種質(zhì)控品均測量8支,測量的平均總細(xì)胞密度 (TCD) 如圖1所示。4 M和10 M濃度質(zhì)控品的測量值略高于預(yù)期的TCD,但所有測量值均在可接受的10%范圍內(nèi)。所有質(zhì)控品的變異系數(shù) (CV) 均低于 5%。通過 Excel 進(jìn)行線性回歸分析,得到的決定系數(shù) (R²) 為 0.9999,顯示出極佳的線性關(guān)系。

 

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圖1:使用Vi-CELL BLU分析0.5 M、4 M和10 M濃度質(zhì)控品。趨勢線通過 (0;0) 擬合。紅色條表示所用質(zhì)控品的可接受范圍。由于所有樣本的CV值較低,垂直誤差條幾乎不可見

 

 

 

CHO細(xì)胞稀釋系列的制備

 

 

接下來,制備了一個CHO細(xì)胞稀釋系列,以驗證在Vi-CELL BLU整個細(xì)胞密度測量范圍內(nèi),使用活的CHO細(xì)胞時濃度質(zhì)控品所表現(xiàn)出的線性關(guān)系是否依然成立。這里使用的是Rentschler Biopharma SE提供的IgG1生產(chǎn)細(xì)胞系的CHO懸浮細(xì)胞 (Rehberger et al.,2013) 。

 

 

首先,將細(xì)胞在37 ℃、180 rpm(25 mm軌道振蕩直徑)的條件下,培養(yǎng)于50 mL PowerCHO培養(yǎng)基 (Lonza) 中,培養(yǎng)基中添加了L-谷氨酰胺和PenStrep(均為Carl RothGmbH+Co.KG),最終濃度為2 mM L-谷氨酰胺、100 I.U./mL青霉素和100 μg/L鏈霉素。

 

細(xì)胞在總細(xì)胞密度 (TCD) 達(dá)到4.21×10?個細(xì)胞/mL、活率為97.08%時被收獲,并通過180 rpm離心5分鐘進(jìn)行沉淀。

 

將沉淀用13.3 mL新鮮的PowerCHO培養(yǎng)基重新懸浮,得到的總細(xì)胞密度為18.05×10?個細(xì)胞/mL(使用Vi-CELL BLU細(xì)胞計數(shù)儀測量的10個重復(fù)樣本的平均值)。

 

將得到的細(xì)胞懸浮液用于建立一個包含9種不同細(xì)胞密度的稀釋系列,范圍從0.03×10?到18.05×10?個細(xì)胞/mL(表2)。

 

表2:CHO細(xì)胞稀釋系列。除18.05×10?個細(xì)胞/mL外,所有密度均為根據(jù)起始懸浮液的總細(xì)胞密度 (TCD) 和稀釋倍數(shù)計算得出的密度

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CHO細(xì)胞的測量

 

 

隨后,使用Vi-CELL BLU細(xì)胞計數(shù)儀在常規(guī)檢測模式下(200 μL樣品體積),將所有細(xì)胞密度的樣品加載到24位轉(zhuǎn)盤中進(jìn)行測量,并采用表3中描述的定制化細(xì)胞類型設(shè)置。每種密度測量了10個重復(fù)樣本。

 

表3:測量CHO細(xì)胞稀釋系列的細(xì)胞類型設(shè)置

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細(xì)胞計數(shù)分析

 

 

最后,收集并分析了所有數(shù)據(jù)。每個稀釋度的平均總細(xì)胞密度 (TCD) 和變異系數(shù)如表4所示。

 

表4:稀釋系列的平均總細(xì)胞密度 (TCD) 和變異系數(shù)

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這些數(shù)據(jù)的圖形化展示見圖2。根據(jù)移液管的準(zhǔn)確性,計算了水平誤差條,并添加了垂直誤差條以表示重復(fù)樣本的標(biāo)準(zhǔn)偏差。

 

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圖2:Vi-CELL BLU細(xì)胞計數(shù)儀從0.03×10?到18.05×10?個細(xì)胞/mL的結(jié)果,每個稀釋度10個重復(fù)。水平誤差條表示稀釋的不確定性,垂直誤差條顯示標(biāo)準(zhǔn)偏差。線性回歸曲線被強制通過 (0;0)

 

圖2中的數(shù)據(jù)顯示了在整個范圍內(nèi)極佳的線性關(guān)系 (R²=0.9997) 。這證實了Vi-CELL BLU細(xì)胞計數(shù)儀在整個濃度范圍(0.05×10?到15×10?個細(xì)胞/mL)內(nèi)提供了極佳的線性關(guān)系。

通常,較低的細(xì)胞密度更容易受到測量不確定性的干擾,因為每張圖像中的細(xì)胞計數(shù)總數(shù)較少。圖3展示了一個細(xì)胞計數(shù)儀在低細(xì)胞密度下更深入地性能分析。在這里,僅顯示了較低的六個數(shù)據(jù)點,密度范圍從0.03×10?到1.20×10?個細(xì)胞/mL。

 

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圖3:Vi-CELL BLU細(xì)胞計數(shù)儀從0.03×10?到1.20×10?個細(xì)胞/mL的結(jié)果,每個稀釋度10個重復(fù)。水平誤差條表示稀釋的不確定性;垂直誤差條顯示標(biāo)準(zhǔn)偏差。線性回歸曲線被強制通過 (0;0)

 

再次看到極佳的線性關(guān)系 (R²=0.9998) ,證明了該Vi-CELL BLU細(xì)胞計數(shù)儀能夠準(zhǔn)確區(qū)分低密度細(xì)胞樣本。在Vi-CELL BLU細(xì)胞計數(shù)儀的濃度測量范圍內(nèi),所有樣本的變異系數(shù)均低于10%,顯示出該儀器的精確性——即使在低細(xì)胞密度下也是如此。

 

結(jié) 論

 

所展示的數(shù)據(jù)證實了Vi-CELL BLU細(xì)胞計數(shù)儀能夠準(zhǔn)確測定寬范圍的細(xì)胞密度(Beckman Coulter Life Sciences,2019)。CHO細(xì)胞稀釋系列的平均總細(xì)胞計數(shù)范圍從0.03×10?到18.05×10?個細(xì)胞/mL,顯示出極佳的線性關(guān)系(R²>0.999),甚至超出了儀器測量范圍的下限。此外,所有在適當(dāng)測量范圍內(nèi)的樣本變異系數(shù)均低于10%,進(jìn)一步支持了Vi-CELL BLU細(xì)胞計數(shù)和活率分析儀的能力。

 

 

 

參考文獻(xiàn):


 

1. Beckman Coulter Life Sciences. (2019). Cell Counting Performance of Vi-CELL BLU Cell Viability Analyzer. (PART-5060APP03.19).

2. Rehberger, B., Wodarczyk, C., Reichenbächer, B., Köhler, J., Weber, R., & Müller, D. (2013). Accelerating stable recombinant cell line development by targeted integration. BMC Proceedings, 7(S6), P111. doi:10.1186/1753-6561-7-s6-p111

 

 

 

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